江蘇疫苗熱原檢測結果判定
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發(fā)布時間：2025-10-16
隨著發(fā)熱反應分子機制研究的不斷深化，單核細胞活化試驗（MAT）作為一種體外熱原檢測技術，愈發(fā)受到醫(yī)藥與醫(yī)療器械行業(yè)的關注并逐步推廣應用。該方法的原理是：讓人體全血與待檢樣品中的熱原充分接觸后，通過檢測體系中產生的 IL-1β、IL-6（因穩(wěn)定性強、重復性優(yōu)，常作為關鍵檢測指標）、TNF 等促炎細胞因子含量，實現(xiàn)對熱原污染程度的評估，整個過程能高度模擬人體先天免疫系統(tǒng)對熱原的應答反應。相較于傳統(tǒng)熱原檢測手段，MAT 的優(yōu)勢更為突出：不僅可檢出各類熱原污染物，包括尚未明確性質的未知熱原，以及革蘭氏陽性菌（脂磷壁酸）、真菌、病毒等產生的非內毒素熱原，填補了傳統(tǒng)內毒素檢測（如鱟試劑法）的覆蓋空白。此外，MAT 無需使用實驗動物，契合全球 “替代、減少、優(yōu)化”（3R 原則）的監(jiān)管導向，目前已被《歐洲藥典》等法規(guī)列為家兔熱原試驗的替代方法，進一步提升了其在合規(guī)檢測中的適用性。
生物制品的高蛋白、螯合劑基質易對鱟試驗產生抑制，rCR與MAT聯(lián)合策略可消除干擾并控制熱原。江蘇疫苗熱原檢測結果判定
中國藥典與歐洲藥典對 MAT 熱原檢測的細胞類型及復孔數(shù)有明確要求，且存在細節(jié)差異。細胞類型上，兩者均認可人全血、PBMC（外周血單個核細胞，至少 4 個供體，歐洲藥典建議 8 個供體），中國藥典明確將單核細胞系納入，歐洲藥典則要求單核細胞系需做支原體污染檢測、細胞鑒別等；檢測方法均為 “熱原刺激細胞 + ELISA 檢測 IL-6/IL-1β/TNF-α”。復孔數(shù)方面，兩者均規(guī)定平行孔≥4、濃度點≥4，中國藥典額外要求標曲 r≥0.90，主要目的是通過多重復孔抵消 PBMC 的不穩(wěn)定性，確保熱原檢測結果準確可靠。
江蘇合規(guī)性熱原檢測合規(guī)申報家兔法熱原試驗雖能篩查所有類別熱原，卻因周期長、成本高、靈敏度低而逐步被體外方法取代。
革蘭氏陽性菌注射劑產品只依賴內毒素檢測存在安全風險，需結合熱原檢測特性制定防控方案。內毒素是革蘭氏陰性菌細胞壁的脂多糖成分，而革蘭氏陽性菌可產生非內毒素熱原（NEPs），如脂磷壁酸，這類物質同樣能引發(fā)人體發(fā)熱反應，若只檢測內毒素，可能遺漏 NEPs 污染，導致臨床用藥風險。對此，風險評估需重點關注三點：一是建議開展家兔法與內毒素檢測的一致性實驗，對比兩種方法的檢測結果，排查是否存在內毒素未檢出但家兔法陽性的情況；二是采用 MAT 法熱原檢測，其通過單核細胞活化機制，可同時識別內毒素與 NEPs，若 MAT 法檢測陽性，需進一步追溯 NEPs 來源；三是若無法排除 NEPs 風險，必須按藥典要求補充熱原檢測（如 MAT 法或家兔法），而非只依賴內毒素檢測。尤其對于新藥或工藝變更后的產品，需通過多方法驗證，確保熱原檢測覆蓋所有潛在致熱物質，保障臨床用藥安全。
MAT 法熱原檢測標曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優(yōu)勢在于提升標曲準確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關鍵濃度區(qū)間：熱原檢測的重點關注區(qū)為低濃度拐點（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺區(qū)（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區(qū)間設置更多濃度點（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點少，易導致低濃度熱原定量不準。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續(xù)稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會累積，導致低濃度點實際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨配制每個濃度點（如直接用標準品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據樣品預期濃度調整標曲范圍，如樣品預期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點，確保樣品濃度落在標曲線性區(qū)，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優(yōu)勢使非倍比稀釋成為 MAT 法標曲配制的優(yōu)先選擇方式。
熱作為一種能引起人體溫異常升高的物質，一旦存在于藥品、醫(yī)療器械等產品中，將給患者帶來嚴重的健康風險。
熱原檢測技術自 20 世紀初問世以來，經歷了 “動物試驗→體外生化檢測→細胞生物學檢測” 的三次關鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準確性與全面性的提升。20 世紀初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實現(xiàn)了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀 60 年代，鱟試驗法（LAL 法）的發(fā)明開啟了熱原檢測的 “體外生化時代”，利用鱟血變形細胞裂解物的凝血級聯(lián)反應檢測細菌內毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時間縮短至 1-2 小時，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內毒素，無法覆蓋非內毒素熱原。21 世紀以來，重組技術與細胞生物學技術的發(fā)展推動熱原檢測進入 “全熱原管控時代”：重組級聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實現(xiàn)標準化生產；單核細胞活化反應測定（MAT）利用人源單核細胞檢測全類型熱原，填補非內毒素熱原檢測空白，且結果更貼近人體實際反應。
熱原檢測實驗中，標準化培養(yǎng)基與恒定環(huán)境讓單核細胞系活性穩(wěn)定，避免PBMC凍存后的功能衰減。江蘇疫苗熱原檢測結果判定選擇熱原檢測單核細胞活化反應測定法，即是選擇更準確、更安全、更可持續(xù)的檢測方案。江蘇疫苗熱原檢測結果判定
中國藥典對 MAT 法熱原檢測要求 4 復孔，未明確 CV 限值，需結合細胞實驗特性合理解讀與操作。藥典不設 CV 限值的主要原因是：MAT 法基于細胞反應，細胞活性易受環(huán)境微小變化（如溫度、pH）影響，存在天然不穩(wěn)定性，過嚴的 CV 要求可能脫離實際；但實驗室可通過積累多批次數(shù)據，制定內部 CV 控制范圍（如定量上下限 CV≤30%、25%），確保檢測重復性。關于 3 復孔的適用性：若長期數(shù)據顯示 CV 控制良好（如連續(xù) 10 批次 CV<20%），且樣品為中間過程檢測（非 QC 放行），可嘗試 3 復孔，但需同步設置加標對照，驗證結果可靠性；若為 QC 放行檢測，仍建議按 4 復孔操作，符合藥典下限要求。對于異常點處理，可采用狄克遜準則（Q 檢驗）等統(tǒng)計學方法 —— 如某復孔 IL-6 檢測值偏離平均值 30% 以上，且無明顯操作誤差（如加樣錯誤），可判定為異常點并剔除，但需在原始記錄中詳細說明原因，確保數(shù)據可追溯，避免隨意剔除導致結果失真。
江蘇疫苗熱原檢測結果判定
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