廣東醫(yī)療器械內(nèi)毒素檢測(cè)低內(nèi)毒素回收
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發(fā)布時(shí)間：2025-10-15
內(nèi)毒素檢測(cè)鱟試劑的反應(yīng)受pH的干擾。在進(jìn)行檢測(cè)時(shí)，要調(diào)節(jié)被測(cè)溶液的pH值，使鱟試劑與供試品溶液的混合溶液pH值落在鱟試劑指定的使用pH范圍內(nèi)（一般鱟試劑作用pH值在6.0~8.0范圍內(nèi))。用于調(diào)節(jié)pH值的試液或溶液（酸或堿)，可采用BET用水配制，并將溶液在無熱原容器中儲(chǔ)存；必須對(duì)試液或溶液進(jìn)行驗(yàn)證，以證明不含可檢出的內(nèi)毒素并且無干擾因素。調(diào)節(jié)pH試劑（酸或堿）的添加量，不應(yīng)該超過供試品的1092。如果超過10%，則在進(jìn)行計(jì)算時(shí)，將DH試劑的添加量的系數(shù)計(jì)算進(jìn)去。
細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水需符合滅菌注射用水標(biāo)準(zhǔn)，內(nèi)毒素含量有明確限值且無干擾。廣東醫(yī)療器械內(nèi)毒素檢測(cè)低內(nèi)毒素回收
隨著動(dòng)物保護(hù)理念和法規(guī)要求升級(jí)，重組因子C法（rFC法）作為 LAL 法的替代技術(shù)逐漸普及。重組 C 因子是以基因重組的方式表達(dá)的 LAL 試劑中的 C 因子，C 因子被內(nèi)毒素活化后切割熒光底物產(chǎn)生游離熒光基團(tuán)，通過檢測(cè)熒光信號(hào)可以反應(yīng)活化后的蛋白酶活性，并由此可以推算出內(nèi)毒素的含量。與傳統(tǒng) LAL 法相比，rFC 法無需依賴鱟血資源，避免了天然 LAL 試劑批間差異大、易受 β- 葡聚糖干擾等問題，且反應(yīng)特異性更強(qiáng)。目前，《美國藥典》、《歐洲藥典》等法規(guī)已收錄 rFC 法，歐盟更推薦其用于疫苗等高風(fēng)險(xiǎn)產(chǎn)品檢測(cè)，在保證檢測(cè)準(zhǔn)確性的同時(shí)，符合動(dòng)物福利和可持續(xù)發(fā)展要求。
北京原料藥內(nèi)毒素檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素檢測(cè)中，rCR 對(duì)高蛋白（如單抗、FBS）、細(xì)胞培養(yǎng)上清等特殊樣本適配性好。
針對(duì)單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定法（MAT）通過檢測(cè)內(nèi)毒素的生物活性，有效規(guī)避低內(nèi)毒素回收（LER）對(duì)內(nèi)毒素檢測(cè)的影響。其原理是：熱原（包括被掩蔽的 LPS）活化單核細(xì)胞表面的 TLR 受體，釋放 IL-6 等細(xì)胞因子，通過 ELISA 檢測(cè) IL-6 濃度，結(jié)合標(biāo)準(zhǔn)曲線推算熱原含量。即使 LPS 因 LER 改變超分子結(jié)構(gòu)，只要仍具生物活性，就能被 MAT 法識(shí)別。這種 “檢測(cè)活性而非結(jié)構(gòu)” 的特性，使 MAT 法成為 LER 場(chǎng)景下內(nèi)毒素檢測(cè)的重要補(bǔ)充，與其他方法協(xié)同構(gòu)建高效可靠的熱原防控體系。
生物制品（如單抗、疫苗、重組蛋白）注射劑因直接進(jìn)入人體，對(duì)細(xì)菌內(nèi)毒素殘留限值要求嚴(yán)苛（通常≤0.5 EU/mg 或更低），檢測(cè)面臨基質(zhì)復(fù)雜、干擾物質(zhì)多等挑戰(zhàn)。樣品中常見的蛋白質(zhì)、螯合劑、表面活性劑等可能抑制或增強(qiáng) LAL 反應(yīng)，需通過預(yù)處理消除干擾：如采用稀釋法降低基質(zhì)濃度、添加中和劑（如 Mg2?）修復(fù)反應(yīng)體系，或使用熱滅活去除蛋白類干擾物。此外，生物制品生產(chǎn)全流程需進(jìn)行內(nèi)毒素監(jiān)控，從細(xì)胞培養(yǎng)上清、純化中間品到終產(chǎn)品均需檢測(cè)，確保工藝去除內(nèi)毒素的有效性，符合 ICH Q6B 等法規(guī)對(duì) “關(guān)鍵質(zhì)量屬性” 的控制要求。
含蛋白酶的樣本致假陽性時(shí)，可稀釋后 70℃加熱 5-15min 滅活，再做內(nèi)毒素檢測(cè)。
內(nèi)毒素檢測(cè)法規(guī)體系正逐步向非動(dòng)物源試劑傾斜，為重組試劑的應(yīng)用鋪平道路。美國藥典（USP）已將重組 C 因子（rFC）和重組級(jí)聯(lián)試劑（rCR）正式收錄，于2025 年 5 月納入 USP-NF，明確要求用戶驗(yàn)證重組試劑對(duì)特定產(chǎn)品的適用性。歐洲藥典（EP）通則 2.6.32 已收錄重組 C 因子法，規(guī)定注射用水和純化水可直接采用該方法檢測(cè)，復(fù)雜基質(zhì)樣品需通過驗(yàn)證后使用。日本藥原則通過指導(dǎo)原則<G4-4-180>將重組蛋白試劑列為內(nèi)毒素檢測(cè)的補(bǔ)充方法。中國藥典雖暫未正式收錄重組方法，但 9251《細(xì)菌內(nèi)毒素法應(yīng)用指導(dǎo)原則》為其應(yīng)用提供了框架。這些法規(guī)進(jìn)展共同構(gòu)建了重組試劑的合規(guī)應(yīng)用基礎(chǔ)。
樣本含內(nèi)毒素結(jié)合物時(shí)，可嘗試用分散劑減少抑制，保障內(nèi)毒素正常檢出。江蘇高效內(nèi)毒素檢測(cè)技術(shù)服務(wù)鱟試劑靈敏度復(fù)核至關(guān)重要，存放半年需重測(cè)，避免內(nèi)毒素檢測(cè)出現(xiàn)假陰性或假陽性。廣東醫(yī)療器械內(nèi)毒素檢測(cè)低內(nèi)毒素回收
檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素的堂試劑方法，是一個(gè)生物反應(yīng)過程，受到很多因素的干擾。在一個(gè)供試品的檢測(cè)方法固定下來之前，為了得到準(zhǔn)確的結(jié)果，必須要了解供試品與鱟試劑之間的相互關(guān)系。供試品中的成分往往非常復(fù)雜，而且會(huì)干擾試驗(yàn)檢測(cè)系統(tǒng)的功能。很多干擾的機(jī)理，并不是非常清楚。但是業(yè)界比較能夠接受的理論是，如果供試品中某些因子影響了鱟試劑中蛋白的表達(dá)功能，則被認(rèn)為是干擾作用（Inhibition/Enhancement，V/E）。干擾作用產(chǎn)生的因素較多，一般包括試劑因素（鱟試劑、內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品）供試品因素（pH值、溫度、離子強(qiáng)度、濃度、水溶性、黏度、可發(fā)生鱟試劑反應(yīng)的非內(nèi)毒素雜質(zhì)）和實(shí)驗(yàn)因素（試驗(yàn)器皿、細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水、鱟試劑抗干擾能力）等。
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