MAT 法熱原檢測的關(guān)鍵機制是 “熱原活化單核細胞 TLR 受體，觸發(fā)炎癥因子分泌”，TLR 受體的全覆蓋是保障檢測無遺漏的關(guān)鍵。不同熱原需活化不同 TLR 受體：最常見的內(nèi)毒素（LPS）主要活化 TLR4，而革蘭氏陽性菌的非內(nèi)毒素?zé)嵩ㄈ缰妆谒幔┬杌罨?TLR2/6，真菌多糖活化?TLR2/4，病毒核酸活化 TLR3/7/8 等。因此，MAT 試劑盒配套細胞需具備全覆蓋的 TLR 受體表達—湖州申科生物通過 Western blot 驗證，其 HL-60 細胞系表達 TLR1-TLR9，可響應(yīng)各類熱原。為進一步驗證覆蓋能力，申科用不同非內(nèi)毒素?zé)嵩潴w（如脂磷壁酸、酵母多糖）刺激細胞，結(jié)果顯示所有配體均能誘導(dǎo) IL-6 分泌，且呈良好量效關(guān)系，證明試劑盒可檢出各類熱原。若細胞 TLR 受體覆蓋不全（如缺失 TLR2），則無法檢測革蘭氏陽性菌的非內(nèi)毒素?zé)嵩瑢?dǎo)致漏檢風(fēng)險，因此 TLR 受體的全覆蓋是 MAT 法熱原檢測的關(guān)鍵技術(shù)指標(biāo)之一。

傳統(tǒng)細菌內(nèi)毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法識別革蘭氏陽性菌 LTA、真菌酵母多糖、病毒鞭毛蛋白等非內(nèi)毒素?zé)嵩?，存在漏檢風(fēng)險；同時，部分樣品（如脂質(zhì)體、表面活性劑制劑）會因內(nèi)毒素吸附導(dǎo)致低內(nèi)毒素回收（LER），BET法難以準確定量。MAT 法通過單核細胞表面的多種 TLR 受體（TLR1-TLR10），可識別不同類型熱原：TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA 與酵母多糖、TLR5 識別鞭毛蛋白、TLR3 識別病毒 dsRNA 等，實現(xiàn) “全熱原覆蓋”。湖州申科生物熱原檢測試劑盒（MAT法）的驗證數(shù)據(jù)顯示，其對不同濃度非內(nèi)毒素?zé)嵩许憫?yīng)：如 0.1-100μg/mL 鞭毛蛋白可檢測到 0.005-0.035EU/mL熱原活性，0.1-10μg/mL LTA 對應(yīng) 0.1-0.7EU/mL 熱原活性，1-100μg/mL 雷西莫特（TLR7/8 配體）對應(yīng) 0.5-3.0EU/mL 熱原活性。此外，MAT法檢測的是熱原的生物活性（而非單純 LPS 含量），可避免 LER 導(dǎo)致的假陰性，為CGT等高風(fēng)險產(chǎn)品提供更有保障的熱原檢測方案。

MAT法熱原檢測中，樣品與細胞共培養(yǎng)時長需嚴格控制，以保障炎癥因子分泌量穩(wěn)定。說明書要求共培養(yǎng) 24 小時，雖未明確允差，但實驗驗證顯示，±30 分鐘的允差對結(jié)果無明顯影響 —— 細胞因子（如 IL-6）分泌具有時間依賴性，24 小時左右達到分泌平臺期，半小時差異不會導(dǎo)致分泌量大幅波動。若實驗室對結(jié)果穩(wěn)定性要求極高（如 QC 放行檢測），建議嚴格按 24 小時操作，避免因時長差異引入誤差；若為預(yù)實驗（如樣品稀釋倍數(shù)摸索），±30 分鐘允差可接受，但需在記錄中注明實際培養(yǎng)時長。需注意的是，共培養(yǎng)時長不可超過 26 小時或短于 22 小時：過長會導(dǎo)致細胞活性下降（炎癥因子分泌減少），過短則未達分泌平臺期（檢測信號偏低），均可能導(dǎo)致熱原濃度低估。此外，培養(yǎng)環(huán)境需保持穩(wěn)定（37℃、5% CO?），溫度波動會影響細胞代謝，間接導(dǎo)致共培養(yǎng)時長的實際效果偏離，因此需定期校準培養(yǎng)箱溫度，確保環(huán)境條件一致。

熱原是指微量即可引發(fā)恒溫動物體溫異常升高的物質(zhì)，分為內(nèi)源性（如細胞因子）與外源性兩類，外源性熱原又涵蓋微生物來源（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等）與非微生物來源（灰塵、橡膠降解產(chǎn)物等）。傳統(tǒng)細菌內(nèi)毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩鴨魏思毎罨囼灒∕AT）可彌補這一缺陷。其原理是：熱原通過活化單核細胞表面的 Toll 樣受體（TLR，如 TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA），啟動先天免疫反應(yīng)，促使細胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子；隨后采用 ELISA 法檢測 IL-6 濃度，結(jié)合 LPS 標(biāo)準曲線推算樣品中總熱原含量，實現(xiàn)對內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩耐綑z測，契合《中國藥典》9301 指導(dǎo)原則中 全場景防控?zé)嵩L(fēng)險”的要求。

在單核細胞活化試驗（MAT）的熱原檢測中，IL-6 被確定為關(guān)鍵檢測指標(biāo)，而非 IL-1β 或 TNF-α，主要源于其在穩(wěn)定性、生物學(xué)關(guān)聯(lián)性及商業(yè)化應(yīng)用上的優(yōu)勢。從穩(wěn)定性來看，IL-6 在體外培養(yǎng)環(huán)境中受個體免疫狀態(tài)影響較小，半衰期更長，實驗重復(fù)性更優(yōu)，且檢測靈敏度高，能準確定量熱原污染水平；而 TNF-α 和 IL-1β 產(chǎn)生時間短、表達量低，還易被蛋白酶降解，導(dǎo)致檢測信號波動大，難以標(biāo)準化。從生物學(xué)特性而言，IL-6 是先天免疫反應(yīng)的炎癥介質(zhì)，可通過活化 JAK-STAT 和 NF-κB 通路驅(qū)動急性期反應(yīng)，如誘導(dǎo)大腦產(chǎn)生前列腺素 E2（PGE2）觸發(fā)發(fā)熱，與熱原的致熱機制直接關(guān)聯(lián)，是公認的發(fā)熱標(biāo)志物。同時，MAT 法熱原檢測會輔以 IL-1β 和 TNF-α 監(jiān)測 ——IL-1β 反映單核細胞活化程度，TNF-α 提示炎癥放大效應(yīng)，形成多因子協(xié)同體系。此外，IL-6 的 ELISA 試劑盒市場成熟度高、跨平臺兼容性強，而 IL-1β 和 TNF-α 的檢測方法在靈敏度和標(biāo)準化上仍有局限，進一步奠定了 IL-6 的重要地位。