熱原是指微量即可引發(fā)恒溫動(dòng)物體溫異常升高的物質(zhì)，分為內(nèi)源性（如細(xì)胞因子）與外源性兩類，外源性熱原又涵蓋微生物來(lái)源（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS、革蘭氏陽(yáng)性菌脂磷壁酸 LTA、病毒、真菌等）與非微生物來(lái)源（灰塵、橡膠降解產(chǎn)物等）。傳統(tǒng)細(xì)菌內(nèi)毒素檢查法（BET）只能檢測(cè)革蘭氏陰性菌的 LPS，無(wú)法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?，而單核?xì)胞活化試驗(yàn)（MAT）可彌補(bǔ)這一缺陷。其原理是：熱原通過(guò)活化單核細(xì)胞表面的 Toll 樣受體（TLR，如 TLR4 識(shí)別 LPS、TLR2/TLR6 識(shí)別 LTA），啟動(dòng)先天免疫反應(yīng)，促使細(xì)胞釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細(xì)胞因子；隨后采用 ELISA 法檢測(cè) IL-6 濃度，結(jié)合 LPS 標(biāo)準(zhǔn)曲線推算樣品中總熱原含量，實(shí)現(xiàn)對(duì)內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩耐綑z測(cè)，契合《中國(guó)藥典》9301 指導(dǎo)原則中 全場(chǎng)景防控?zé)嵩L(fēng)險(xiǎn)”的要求。

MAT法熱原檢測(cè)中，樣品與細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí)長(zhǎng)需嚴(yán)格控制，以保障炎癥因子分泌量穩(wěn)定。說(shuō)明書(shū)要求共培養(yǎng) 24 小時(shí)，雖未明確允差，但實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證顯示，±30 分鐘的允差對(duì)結(jié)果無(wú)明顯影響 —— 細(xì)胞因子（如 IL-6）分泌具有時(shí)間依賴性，24 小時(shí)左右達(dá)到分泌平臺(tái)期，半小時(shí)差異不會(huì)導(dǎo)致分泌量大幅波動(dòng)。若實(shí)驗(yàn)室對(duì)結(jié)果穩(wěn)定性要求極高（如 QC 放行檢測(cè)），建議嚴(yán)格按 24 小時(shí)操作，避免因時(shí)長(zhǎng)差異引入誤差；若為預(yù)實(shí)驗(yàn)（如樣品稀釋倍數(shù)摸索），±30 分鐘允差可接受，但需在記錄中注明實(shí)際培養(yǎng)時(shí)長(zhǎng)。需注意的是，共培養(yǎng)時(shí)長(zhǎng)不可超過(guò) 26 小時(shí)或短于 22 小時(shí)：過(guò)長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞活性下降（炎癥因子分泌減少），過(guò)短則未達(dá)分泌平臺(tái)期（檢測(cè)信號(hào)偏低），均可能導(dǎo)致熱原濃度低估。此外，培養(yǎng)環(huán)境需保持穩(wěn)定（37℃、5% CO?），溫度波動(dòng)會(huì)影響細(xì)胞代謝，間接導(dǎo)致共培養(yǎng)時(shí)長(zhǎng)的實(shí)際效果偏離，因此需定期校準(zhǔn)培養(yǎng)箱溫度，確保環(huán)境條件一致。

基于單核細(xì)胞系的穩(wěn)定性，MAT 熱原檢測(cè)可將復(fù)孔數(shù)從藥典要求的≥4 降至≥3。PyroSHENTEK®熱原檢測(cè)試劑盒數(shù)據(jù)顯示，單核細(xì)胞系標(biāo)曲的 4 復(fù)孔與 3 復(fù)孔，各濃度點(diǎn)（0.0125-1.0EU/mL）的準(zhǔn)確度（相對(duì)偏差）與精密度均在標(biāo)準(zhǔn)范圍內(nèi)，無(wú)明顯差異。這一調(diào)整的主要依據(jù)是單核細(xì)胞系消除了 PBMC 的異質(zhì)性，無(wú)需依賴多復(fù)孔抵消波動(dòng)，既能滿足熱原檢測(cè)的穩(wěn)定性與統(tǒng)計(jì)學(xué)合理性要求，又能減少試劑與耗材消耗，降低檢測(cè)成本，同時(shí)提升實(shí)驗(yàn)效率。因此樣品預(yù)測(cè)試時(shí)可選擇3復(fù)孔進(jìn)行初步檢測(cè)，產(chǎn)品放行還需按照藥典要求進(jìn)行4復(fù)孔測(cè)試。

熱原檢測(cè)技術(shù)自 20 世紀(jì)初問(wèn)世以來(lái)，經(jīng)歷了 “動(dòng)物試驗(yàn)→體外生化檢測(cè)→細(xì)胞生物學(xué)檢測(cè)” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動(dòng)檢測(cè)效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測(cè)方法只有家兔熱原試驗(yàn)，通過(guò)觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實(shí)現(xiàn)了廣譜檢測(cè)，但存在動(dòng)物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗(yàn)法（LAL 法）的發(fā)明開(kāi)啟了熱原檢測(cè)的 “體外生化時(shí)代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級(jí)聯(lián)反應(yīng)檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級(jí)，檢測(cè)時(shí)間縮短至 1-2 小時(shí)，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測(cè)內(nèi)毒素，無(wú)法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來(lái)，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動(dòng)熱原檢測(cè)進(jìn)入 “全熱原管控時(shí)代”：重組級(jí)聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過(guò)基因工程技術(shù)制備，擺脫對(duì)鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測(cè)全類型熱原，填補(bǔ)非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測(cè)空白，且結(jié)果更貼近人體實(shí)際反應(yīng)。

MAT法熱原檢測(cè)出現(xiàn) “無(wú)信號(hào)”，需從試劑、實(shí)驗(yàn)操作、儀器三方面定位原因并解決。試劑層面，抗體不足或失活會(huì)導(dǎo)致無(wú)法捕獲 IL-6，需核對(duì)抗體稀釋比例，檢查保存條件（如 2-8℃）與有效期，必要時(shí)更換試劑；底物失效（如變色、沉淀）會(huì)無(wú)法顯色，需觀察底物外觀，失效則更換；混合不同試劑盒試劑會(huì)因成分不匹配導(dǎo)致反應(yīng)失敗，需使用同試劑盒試劑；ELISA 試劑盒保存不當(dāng)（如反復(fù)凍融）會(huì)破壞試劑活性，需按說(shuō)明書(shū)分條件保存（如抗體 2-8℃、底物避光）。實(shí)驗(yàn)操作中，孵育溫度過(guò)低（<37℃）會(huì)抑制酶促反應(yīng)，需提前將試劑與孔板平衡至室溫，確保孵育溫度達(dá)標(biāo)；洗板機(jī)壓力過(guò)高或手動(dòng)洗滌過(guò)猛，會(huì)洗去結(jié)合的抗體與酶，需調(diào)整洗板機(jī)壓力或輕柔手動(dòng)洗滌；孵育時(shí)孔板未密封導(dǎo)致孔變干，會(huì)使反應(yīng)體系破壞，需用封口膜密封孔板。儀器方面，洗板機(jī)噴頭堵塞會(huì)導(dǎo)致洗滌不均或未洗，需清理噴頭；酶標(biāo)儀波長(zhǎng)設(shè)置錯(cuò)誤（未選 450nm）會(huì)無(wú)法檢測(cè)信號(hào)，需確認(rèn)波長(zhǎng)設(shè)置正確。